生物醫(yī)藥與支原體檢測

在疫苗、生物藥、細(xì)胞治療領(lǐng)域等領(lǐng)域，支原體檢測發(fā)揮著重要作用，該項檢測是檢查藥物是否遭受外源因子污染的有效手段，是保證產(chǎn)品質(zhì)量的重要質(zhì)控途徑。

我國藥典中有提到，在一些領(lǐng)域需要進行支原體檢測。包括主細(xì)胞庫、工作細(xì)胞庫、生產(chǎn)終末細(xì)胞、檢定細(xì)胞、病毒種子批和病毒收獲液、細(xì)胞培養(yǎng)相關(guān)材料如培養(yǎng)基、胰酶、臨床治療用干細(xì)胞和免疫細(xì)胞、新生牛血清以及雜交瘤細(xì)胞等。

常見的支原體檢測方法有以下幾種：

• 培養(yǎng)法

• 指示細(xì)胞法

• 核酸法

• ELISA法

琳瑯滿目的檢測方法這么多，究竟該怎么選？本期內(nèi)容盤點了幾種常見的支原體檢測方法，希望能幫助小伙伴們選擇適合自己的方法。

方法一：分離培養(yǎng)法

方法

簡單來講，就是從樣品細(xì)胞培養(yǎng)體系中取樣，接種到適宜支原體生長的瓊脂平板上。如果樣本中含有支原體，它們就會在這種瓊脂平板上生長，最終形成明顯可見的特征性菌落。

優(yōu)點

操作規(guī)范的情況下，這種方法很少會出現(xiàn)假陰性結(jié)果，檢測精確度很高，因此被譽為支原體檢測金標(biāo)準(zhǔn)。

該方法也是《美國藥典》中認(rèn)可的支原體檢測方法之一。

缺點

檢測時間太長，支原體要長出明顯克隆至少需要4周時間。

還有一點就是，培養(yǎng)法無法對曾經(jīng)感染過的樣品做出判斷。

另一方面，盡管可以檢測絕大多數(shù)支原體種類，分離培養(yǎng)法也有力所不及的時候，例如支原體M. Hyorhinis。因此，該方法能鑒定的支原體種類有限，成為它的另一個缺點。

方法二：指示細(xì)胞法

方法

將供試品接種于指示細(xì)胞（無污染標(biāo)準(zhǔn)化Vero 細(xì)胞或經(jīng)國家藥品檢定機構(gòu)認(rèn)可的其他細(xì)胞，供試品應(yīng)對該細(xì)胞生長無影響）中培養(yǎng)后，用特異熒光染料進行染色，支原體中的核酸也可以被著色。

因此，如果待檢測細(xì)胞中含有支原體，那么就會導(dǎo)致指示細(xì)胞被感染，進而在細(xì)胞膜或培養(yǎng)基等處發(fā)現(xiàn)藍色熒光（支原體附著在細(xì)胞膜上，也有可能游離在細(xì)胞培養(yǎng)基中）。

優(yōu)點

適用于一些不易培養(yǎng)的支原體，如豬鼻支原體，分離培養(yǎng)法對該支原體檢測并不可靠，但可用DNA染色法準(zhǔn)確地檢測出來。屬于《美國藥典》中認(rèn)可的方法。

缺點

時間較長，從Vero細(xì)胞復(fù)蘇、傳代，再到收集上清后再次培養(yǎng)，有時甚至需要十幾天時間

存在假陽性和假陰性的可能：如一些死亡細(xì)胞釋放出來的DNA會被染成藍色，出現(xiàn)假陽性；或是由于熒光過若而出現(xiàn)假陰性使結(jié)果出現(xiàn)偏差，因此使用這個方法需要一定的經(jīng)驗。

方法三：核酸法

方法

通過對樣品中可能存在的支原體DNA進行擴增并檢測，來判斷樣品是否被支原體污染。常用的核酸法主要有常規(guī)PCR法和熒光定量PCR法（qPCR），德國MB均有針對這兩種方法設(shè)計的高效試劑盒。

優(yōu)點

目前使用較為廣泛，擁有檢測速度快、高特異性、高靈敏度等特點，還可以選配支原體和細(xì)菌DNA、支原體絕對定量標(biāo)準(zhǔn)品，來進行特異性驗證、定量檢測。

《美國藥典》中指出，核酸法經(jīng)過方法學(xué)驗證，可替代培養(yǎng)法以及指示細(xì)胞法這兩種經(jīng)典方法。

缺點

qPCR的檢測試劑盒成本相對較高。

總結(jié)

在選擇支原體檢測方法時，應(yīng)從實際的應(yīng)用場景出發(fā)。

如果只是想判斷樣品是否被支原體污染，無需出具報告等專業(yè)說明，使用德國MB的常規(guī)PCR檢測試劑盒即可。

如果是疫苗、生物藥等產(chǎn)品的上市前檢測，需要出具專業(yè)的報告，則需要用到德國MB的qPCR支原體檢測試劑盒，同時配套使用標(biāo)準(zhǔn)品，完成方法學(xué)驗證，為了提高準(zhǔn)確性和靈敏度，建議配合支原體DNA提取試劑盒一起使用。